Polinización y recursos florales

explicarSe apoya en mediciones y ensayos

La polinización depende de que el polen llegue a una flor receptiva mediante un visitante o el viento; la forma de la flor, sus recursos y el sistema reproductivo de cada planta condicionan ese proceso. Para favorecerla, conviene combinar plantas compatibles con flores y hábitat para distintos visitantes, ordenar la oferta según la floración local y observar qué ocurre en el predio. Una visita floral no demuestra por sí sola que hubo polinización efectiva ni explica por qué una planta produjo pocos frutos o semillas.

Esta página responde 2 preguntas

¿Qué recursos florales —néctar, polen u otros— aprovechan los distintos polinizadores? → De la flor al fruto: qué hace la polinización · Qué atrae a los visitantes y quién puede usarlo · Diseñar una oferta floral y un hábitat útiles · Asegurar polinización en cultivos y árboles
¿Cómo puedes registrar las visitas florales y detectar períodos en que escasean los recursos para los polinizadores? → Diseñar una oferta floral y un hábitat útiles · Registrar visitas y evaluar cambios

8 términos clave

Autopolinización: transferencia de polen al estigma de la misma planta.
Polinización cruzada: transferencia de polen entre plantas o variedades que pueden reproducirse entre sí.
Autoincompatibilidad: condición en la que una planta no logra reproducirse con su propio polen y necesita polen compatible de otra planta.
Estigma: parte de la flor que recibe el polen.
Receptividad del estigma: período en que el estigma puede recibir polen.
Antera: parte de la flor que libera el polen.
Floración masiva: producción de muchas flores durante un intervalo breve.
Polinizador eficaz: visitante que transfiere polen al estigma mientras puede recibirlo.

Antes de empezarObservación e inventario del sitio Ciclos estacionales y calendario

Para decidir qué manejar en un sistema agroforestal, primero identifica si una planta puede reproducirse con su propio polen o necesita polen compatible de otra planta, y si la transferencia ocurre cuando puede recibirlo. Las visitas, los recursos florales y su seguimiento ayudan a interpretar la formación de frutos y semillas.

Recorrido

De la flor al fruto: qué hace la polinización — Revisar qué condiciones permiten que el polen llegue a una flor receptiva y contribuya a la reproducción.
Qué atrae a los visitantes y quién puede usarlo — Relacionar los rasgos florales con los visitantes que podrían usar la flor y observar su comportamiento.
Diseñar una oferta floral y un hábitat útiles — Planificar recursos florales y hábitats para visitantes diferentes.
Asegurar polinización en cultivos y árboles — Revisar compatibilidad y coincidencia de floración en cultivos que requieren polinización cruzada.
Registrar visitas y evaluar cambios — Registrar flores, visitas y resultados reproductivos para evaluar cambios sin atribuirlos a una sola causa.

Casos

Más ejemplos

En el sur de Brasil, la floración abundante de bracatinga poco después del invierno coincide con escasez de otros recursos para insectos.

En cultivos brasileños de maracuyá se propone intercalar Crotalaria juncea porque ambas reciben a la abeja mamangava; no se reporta el resultado de esa propuesta.

En una parcela de Ecuador, el achiote florece todo el año y atrae abejas nativas y otros polinizadores.

En la región

En Uruguay, los insectos son necesarios para la formación de frutos del zapallito; el tiempo soleado y templado a cálido los favorece.

En Salto Grande y otras localidades uruguayas, pitanga, ubajay, guaviyú, arazá, Espina de la Cruz, Espinillo, guayubira y malvavisco se describen como especies melíferas, con floraciones apreciadas por las abejas. En Uruguay también se observa floración primaveral de paltos tipo A y B; su proximidad puede ampliar la coincidencia de fases florales.

En Paysandú, las flores de jacarandá reciben visitas de mangangás y abejas; en Uruguay también se documentó el uso de Bombus terrestris para polinizar tomate.

En Uruguay, algunos ejemplares de arazá de frutos rojos carecen de polen viable, lo que afecta su fructificación. Las evaluaciones sobre la compatibilidad reproductiva de Psidium cattleyanum discrepan y sus condiciones no permiten explicar la diferencia. Sigue abierta la pregunta de qué visitantes polinizan efectivamente poblaciones naturales y cultivos de esta especie en Uruguay. INIA Las Brujas propone estudiar la viabilidad del polen, identificar visitantes efectivos y evaluar polinizaciones dirigidas; son líneas de trabajo, no resultados.

Para practicar

Elige un frutal en flor. En varias observaciones, registra la fecha y las condiciones del momento, qué visitantes llegan y si tocan las partes que liberan y reciben polen. Más adelante, anota cuántos frutos inician su desarrollo y cuántos permanecen.

Cómo razonarla

Usa las visitas y el comportamiento para plantear quién podría transferir polen; contrasta la hipótesis con la compatibilidad de la planta y los conteos de frutos iniciados y persistentes. Si cambia el resultado, considera otras causas antes de atribuirlo a los visitantes.

En varias fechas, registra las plantas en flor, sus períodos y visitantes. Sitúa cada parche respecto de los cultivos, refugios y posibles lugares de nidificación; al repetir el recorrido, anota los intervalos con poca floración.

Cómo razonarla

Compara la secuencia y distribución de recursos con los períodos en que los cultivos necesitan visitantes y con los hábitats disponibles. Usa los vacíos para decidir qué observar o incorporar y repite los registros para comparar cambios en la oferta y las visitas. Al elegir plantas, considera los recursos escasos del paisaje y evita introducir especies silvestres que ya abundan localmente.

Límites y preguntas abiertas

Los registros de Uruguay y el Río de la Plata son ejemplos, no un inventario completo de polinizadores ni de sus períodos de actividad; las decisiones requieren observaciones del propio sitio.

Lo que todavía no sabemos:

¿Qué polinizadores visitan las flores de tu zona y en qué períodos del año están activos?
¿Cómo distinguir en campo si una planta produce pocas semillas por falta de polinización o por incompatibilidad, clima, caída de frutos o estado de la planta?
¿Qué indicadores sencillos y repetibles puedes comparar entre temporadas para saber si cambian la diversidad de visitantes y las funciones ecológicas del predio?
¿Qué distancias entre plantas compatibles y cultivos funcionan en distintos sistemas agroforestales de la región?
¿Qué recursos florales son más escasos en cada paisaje local y en qué períodos?

Relacionado desde otros temas

Relacionado

En áreas tropicales recién deforestadas, el viento puede participar en la polinización de más del 30 % de la flora; durante la regeneración inicial, su importancia disminuye y la polinización animal gana presencia. En comunidades de Costa Rica, la proporción atribuida al viento bajó de 38 % a los seis meses a 22 % al año, 8 % a los dos años y 6 % a los tres años. También cambiaron las proporciones de otros grupos de visitantes.

En la Mata Atlántica se observó estratificación de abejas e insectos; las meliponinas se concentraban principalmente en el dosel. Para algunas meliponinas pequeñas se propone que la pérdida de calor puede favorecer el forrajeo al sol.

En las Lecythidaceae, la capucha floral formada por la base de los estambres varía desde una forma laminar hasta varios pliegues; cuanto más enrollada, más restringido puede ser el acceso al néctar para abejas robustas y de lengua larga.

Las estimaciones de néctar por capítulo de Parkia pendula varían, y las condiciones de medición no se detallan de forma equivalente.

En el castaño de Brasil, las plantaciones no prosperaron donde tampoco prosperaban las abejas de las orquídeas necesarias para polinizarlo. En la Mata Atlántica faltan datos empíricos comparables y de largo plazo para contrastar efectos de polinización entre comunidades.

Sobre esta página: fuentes y datos relacionados

En el fichero de especies. Feijoa sellowiana (15), Psidium cattleianum (8), Parkia pendula (4), Tiarella cordifolia (3), Tropaeolum majus (2), Yucca filamentosa (1).

Plantas sin ficha identificada. Coreopsis rosea y Coreopsis verticillata (6), Taxones del calendario floral de Jacke y Toensmeier para climas templados y templado-fríos (8), Stellaria media y Stellaria tuberosa (3), Annona, Guatteria y otras Annonaceae (7), Especies frutales y variedades citadas para polinización cruzada (26), Especies de plantas nectaríferas y melíferas citadas en fichas o tablas (62), Mirtáceas frutales del sur de Brasil (7), Feijoa y otros frutales visitados por aves, abejas o mamangavas (5).

En otros temas. Contextos biogeográficos y análogos (142), Selección de especies y variedades (30), Frutales, arbustos y frutos secos (28), Contenidos periféricos de las fuentes (9), Plantas medicinales y aromáticas (7), Poda de servicio y rebrote (4), Materia orgánica y formación del suelo (4), Plantas de servicio (3), Propagación por semillas (1), Principios de diseño (1), Vida y redes del suelo (1).

Qué se dejó fuera (6 puntos). Fila sin taxón identificable y distancia transcrita internamente inconsistente; solo conserva información parcial sobre forrajeo. (1); Registro de tabla sin taxón visible; no permite atribuir con seguridad la preferencia floral a un grupo concreto. (2); Dato de cocina o comestibilidad sin aporte adicional a la comprensión de la polinización. (2); Dato general sobre esporas que no aporta al tema de polinización de plantas con flores. (1).

De dónde sale esto. 819 afirmaciones de 75 fuentes. Evidencia: tabla o referencia 42%, afirmacion general 38%, experiencia directa 7%, estudio o medicion 4%.

Dave Jacke con Eric Toensmeier: 362 afirmaciones (2 obras o vídeos)
Carlos Roberto Franke et al. (orgs.): 256 afirmaciones (Carlos Roberto Franke et al. (orgs.) (2005), Mata Atlântica e Biodiversidade)
Inti Sanguinet: 91 afirmaciones (55 obras o vídeos)
Ben Falk: 23 afirmaciones (Ben Falk (2024), The Resilient Farm and Homestead (edición revisada y ampliada))
Raseira et al. (Embrapa Clima Temperado): 20 afirmaciones (Raseira et al. (Embrapa Clima Temperado) (2004), Espécies frutíferas nativas do Sul do Brasil (Documentos 129))
INIA, OPS y UdelaR: 15 afirmaciones (INIA, OPS y UdelaR (2008), Alimentos en la huerta)
DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay): 11 afirmaciones (DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay) (2014), Guía de identificación de especies arbóreas nativas de Uruguay)
Embrapa (varios autores): 10 afirmaciones (Embrapa (varios autores) (2023), Adubação verde e plantas de cobertura no Brasil, vol. 1 (2.ª ed.))
Walter Steenbock y Fabiane Machado Vezzani (orgs.): 6 afirmaciones (Walter Steenbock y Fabiane Machado Vezzani (orgs.) (2023), Agrofloresta)
Vignale, González y Machado (CTM Salto Grande y Facultad de Agronomía, UdelaR): 6 afirmaciones (Vignale, González y Machado (CTM Salto Grande y Facultad de Agronomía, UdelaR) (2020), Frutales nativos presentes en la región de Salto Grande (2.ª ed.))
INIA Las Brujas: 5 afirmaciones (INIA Las Brujas (2019), Frutos nativos (Serie de Actividades de Difusión 789))
Eric Toensmeier: 4 afirmaciones (Eric Toensmeier (2016), The Carbon Farming Solution)
José Fernando dos Santos Rebello y Daniela Ghiringhello Sakamoto: 2 afirmaciones (José Fernando dos Santos Rebello y Daniela Ghiringhello Sakamoto (2021), Agricultura Sintrópica segundo Ernst Götsch)
Valdely Ferreira Kinupp y Harri Lorenzi: 2 afirmaciones (Valdely Ferreira Kinupp y Harri Lorenzi (2014), Plantas alimentícias não convencionais (PANC) no Brasil)
Juan Millán y Diego Romero (IICA Uruguay): 2 afirmaciones (2 obras o vídeos)
Embrapa Florestas: 1 afirmaciones (Embrapa Florestas (2006), Sistemas agroflorestais)
Gilsanz (INIA): 1 afirmaciones (Gilsanz (INIA) (2012), Abonos verdes en la producción hortícola (Serie Técnica 201))
Embrapa Clima Temperado: 1 afirmaciones (Embrapa Clima Temperado (2020), Espécies arbóreas nativas plantadas por agricultores)
I. Siddique et al. (UFSC): 1 afirmaciones (I. Siddique et al. (UFSC) (2017), Agroflorestas agroecológicas do Sul em rede (SAFAS))

Fuentes de esta página

Carlos Roberto Franke et al. (orgs.) (2005), Mata Atlântica e Biodiversidade: p. 21, p. 22, p. 74, p. 75, p. 95, p. 96, p. 97, p. 98, p. 99, p. 100, p. 101, p. 102, p. 103, p. 104, p. 105, p. 106, p. 107, p. 108, p. 109, p. 110, p. 111, p. 112, p. 113, p. 114, p. 115, p. 116, p. 117, p. 118, p. 119, p. 120, p. 121, p. 123, p. 124, p. 125, p. 126, p. 127, p. 129, p. 130, p. 134, p. 154, p. 158, p. 160, p. 161, p. 163, p. 128
Dave Jacke con Eric Toensmeier (2005), Edible Forest Gardens, Vol. 1: p. 32, p. 63, p. 76, p. 80, p. 82, p. 136, p. 154, p. 155, p. 158
Raseira et al. (Embrapa Clima Temperado) (2004), Espécies frutíferas nativas do Sul do Brasil (Documentos 129): p. 24, p. 32, p. 33, p. 46, p. 47, p. 19
Walter Steenbock y Fabiane Machado Vezzani (orgs.) (2023), Agrofloresta: p. 48, p. 49, p. 83
Embrapa (varios autores) (2023), Adubação verde e plantas de cobertura no Brasil, vol. 1 (2.ª ed.): p. 72, p. 160, p. 128, p. 427, p. 428, p. 440
Juan Millán y Diego Romero (IICA Uruguay): 2 obras o vídeos
I. Siddique et al. (UFSC) (2017), Agroflorestas agroecológicas do Sul em rede (SAFAS): p. 25
Inti Sanguinet, «DOCUMENTAL ''Viva Floresta'' De MONOCULTIVO a BOSQUE SINTRÓPICO de ALIMENTOS en 1.5 años, Mashpi Ec» (YouTube): 12:37
Inti Sanguinet: 8 obras o vídeos, 50 obras o vídeos, 38 obras o vídeos
DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay) (2014), Guía de identificación de especies arbóreas nativas de Uruguay: p. 16, p. 50, p. 68, p. 70, p. 76, p. 88, p. 110, p. 122
Vignale, González y Machado (CTM Salto Grande y Facultad de Agronomía, UdelaR) (2020), Frutales nativos presentes en la región de Salto Grande (2.ª ed.): p. 16, p. 18, p. 22, p. 24, p. 30, p. 31
INIA, OPS y UdelaR (2008), Alimentos en la huerta: p. 115, p. 116, p. 118, p. 18, p. 129, p. 136, p. 148
INIA Las Brujas (2019), Frutos nativos (Serie de Actividades de Difusión 789): p. 6, p. 14
Juan Millán y Diego Romero (IICA Uruguay) (2023), Debilidades y oportunidades del sector hortícola y frutícola uruguayo (innovación, financiamiento, adaptación al cambio climático): p. 15
Dave Jacke con Eric Toensmeier: 2 obras o vídeos
Ben Falk (2024), The Resilient Farm and Homestead (edición revisada y ampliada): p. 142, p. 177, p. 178, p. 182, p. 204, p. 205
Eric Toensmeier (2016), The Carbon Farming Solution: p. 18, p. 21, p. 20
Valdely Ferreira Kinupp y Harri Lorenzi (2014), Plantas alimentícias não convencionais (PANC) no Brasil: p. 18, p. 28
José Fernando dos Santos Rebello y Daniela Ghiringhello Sakamoto (2021), Agricultura Sintrópica segundo Ernst Götsch: p. 144
Gilsanz (INIA) (2012), Abonos verdes en la producción hortícola (Serie Técnica 201): p. 42
Embrapa Clima Temperado (2020), Espécies arbóreas nativas plantadas por agricultores: p. 3

Páginas que enlazan aquí

Principios

Conecta floración con reproducción efectiva

Especies

Abutilon grandifoliumAcanthaceaeAcer rubrumAchillea sp.Actaea racemosaActinidia argutaActinostemon amazonicusAegiphila sp.Agastache foeniculumAlcea roseaAllium sp.Alnus sp.Amorpha sp.Andropogon gerardiAnnonaceaeAnnona sp.Antennaria sp.ApiaceaeApios sp.ApocynaceaeAquilegia canadensisArabis caucasicaAralia cordataAralia elataAralia hispidaAralia nudicaulisAralia racemosaArctostaphylos uva-ursiArecaceaeArgentina anserinaArnoglossum atriplicifoliumAronia sp.Asclepias sp.AsteraceaeAster sp.Astragalus sp.Asystasia gangeticaBaptisia sp.Bellis perennisBerberis canadensisBerberis sp.BignoniaceaeBlephilia sp.BoraginaceaeBorago officinalisBrassica sp.BromeliaceaeBunium bulbocastanumCactaceaeCamassia sp.Campanula sp.Campsis radicansCaragana sp.Carex pensylvanicaCarya sp.Casearia decandraCastanea pumilaCeanothus americanusCeanothus prostratusCeanothus sp.Celtis sp.Centrosema brasilianumCentrosema pubescensCentrosema sp.Cercocarpus montanusChaenomeles speciosaChamaemelum nobileChamaenerion angustifoliumChasmanthium latifoliumChrysogonum virginianumChrysosplenium americanumCichorium sp.Cissus discolorClinopodium glabellumColletia paradoxaCombretaceaeConoclinium coelestinumConopodium majusCordia sp.Coreopsis roseaCoreopsis sp.Coreopsis verticillataCornus racemosaCornus sericeaCorylus sp.Crambe maritimaCrocus sativusCryptotaenia sp.Cunila origanoidesCymopterus sp.Cytisus sp.Darmera peltataDiospyros sp.Diospyros virginianaDyssochroma sp.Dyssochroma viridiflorumEchinacea purpureaEchinacea sp.Elaeagnus multifloraElaeagnus sp.Epigaea repensErigenia bulbosaErigeron pulchellusEryngium maritimumErythrina sp.Eschweilera ovataEschweilera sp.Esenbeckia sp.Eutrochium sp.Fagus sp.Foeniculum vulgareGallesia integrifoliaGaultheria shallonGaultheria sp.Gaylussacia sp.Gazania sp.Genista sp.Geum sp.Ginkgo bilobaGlycyrrhiza sp.Gomphrena portulacoidesGongora quinquenervisGuarea sp.Guatteria sp.Helianthus sp.HeliconiaceaeHeliconia sp.Heliopsis helianthoidesHemerocallis sp.Heracleum maximumHeracleum sphondyliumHeuchera americanaHibiscus syriacusHieracium venosumHydrophyllum sp.Ilex glabraIpomoea sp.Iris sp.Jacaranda mimosifoliaLactuca perennisLamiaceaeLathyrus sp.LecythidaceaeLespedeza sp.Levisticum officinaleLigusticum sp.Lilium sp.Lobelia cardinalisLomatium sp.Lonicera sempervirensLonicera sp.Lycopus uniflorusMachaerium sp.Magnolia virginianaMalpighiaceaeMalvaceaeMatricaria chamomillaMatthiola incanaMelissa officinalisMerinthopodium sp.Mespilus germanicaMiconia sp.Micromeria douglasiiMikania sp.Mimosa flocculosaMitella diphyllaMonarda didymaMonarda fistulosaMonarda sp.Monteverdia ilicifoliaMyrcianthes pungensMyrciaria sp.Myrica sp.Myrrhis odorataOchroma pyramidaleOcotea glomerataOpuntia sp.OrchidaceaeOsmorhiza sp.Paeonia sp.Panax quinquefoliusPanax trifoliusParkia pendulaParkia sp.Parthenium integrifoliumPassiflora edulisPassiflora incarnataPediomelum esculentumPerideridia gairdneriPersea borboniaPetasites japonicusPhaseolus polystachiosPhlox sp.Pimpinella saxifragaPlatycodon grandiflorusPolytaenia nuttalliiProsopis glandulosaPrunus salicinaPrunus sp.Prunus tomentosaPseudopodospermum hispanicumPsychotria tenuinervisPycnanthemum sp.Pyrus bretschneideriPyrus sp.Reynoutria japonicaRhodiola roseaRhododendron sp.Rhus sp.Ribes nigrumRibes odoratumRibes rubrumRibes uva-crispaRibes × nidigrolariaRobinia hispidaRobinia pseudoacaciaRobinia viscosaRosa sp.RubiaceaeRudbeckia hirtaRumex acetosellaSalvia sp.Sambucus canadensisSanguisorba sp.Sassafras albidumSaxifraga stoloniferaSedum sp.Senecio sp.Shepherdia canadensisSilphium sp.Simmondsia chinensisSium sisarumSmallanthus uvedaliaSolanaceaeSolidago odoraSolidago sp.Sorbus sp.Souroubea guianensisSpermacoce sp.Stachys sp.Stellaria mediaStellaria sp.Styphnolobium japonicumSymphyotrichum novae-angliaeTachigali densifloraTaenidia integerrimaTagetes sp.Tanacetum vulgareTapirira guianensisTetradium danielliiThaspium sp.Thymus sp.Tiarella cordifoliaTorreyostellaria jamesianaTradescantia virginianaTrianaea sp.Trichilia lepidotaTrillium grandiflorumTripsacum dactyloidesTropaeolum majusVaccinium sp.VelloziaceaeVerbenaceaeVerbena canadensisVernonia noveboracensisVeronicastrum virginicumVeronica officinalisViburnum cassinoidesViburnum lentagoViburnum trilobumViolaceaeViola arvensisViola sp.Viola × wittrockianaVitex agnus-castusVitis rotundifoliaVochysiaceaeWisteria sp.Wyethia sagittataYucca filamentosaYucca sp.Zanthoxylum sp.Zizia sp.Ziziphus jujuba