Esquejes, estacas y división

Esta página te ayuda a decidir cuándo multiplicar plantas por fragmentos, estacas o división, según lo que buscas y el espacio y los cuidados que puedes sostener. Obtener más ejemplares también influye en el ritmo y la escala con que estableces el sistema.

Decidir si conviene propagar por vía vegetativa

La propagación vegetativa forma una planta nueva a partir de una parte de la planta madre y conserva sus características; las semillas pueden producir plantas distintas. Si quieres repetir las cualidades de una planta conocida, elige la vía vegetativa cuando la especie lo permita; si buscas producir muchas plantas y explorar variación, elige semilla. Multiplicar plantas propias puede reducir las compras, aunque toma tiempo. La estaquia —multiplicación mediante estacas, fragmentos de tallo que forman raíces— puede adelantar la producción o acortar el período juvenil, es decir, el tiempo hasta que la planta empieza a producir, en algunas especies.

elige la propagación según el objetivo genético

La respuesta al enraizamiento cambia según la especie, la planta madre, el material y las condiciones del lugar; toma las orientaciones como punto de partida para elegir qué probar.

Elegir el material y el momento

El enraizamiento depende del vigor y la edad de la planta madre, el ritmo de crecimiento, la época y la parte de la rama. Los tejidos jóvenes suelen formar raíces adventicias —raíces que nacen en tallos u otros tejidos que normalmente no las producen— con más facilidad. También puede cambiar la respuesta entre la punta y la base de una misma rama.

Clasifica la estaca por la consistencia del tallo: la herbácea se toma de una punta tierna, la semileñosa de una rama con hojas y más consistencia, y la leñosa de tejido endurecido. Elige el momento de corte según el tipo de estaca y la especie.

Preparar y mantener el enraizamiento

Una estaca necesita agua alrededor de la base y espacios de aire en el sustrato. Si este conserva su porosidad después de mojarse, puede favorecer la formación de raíces adventicias y reducir problemas de enfermedad. Elige el sustrato según la especie, lo que tienes disponible y su costo; no hay una mezcla que funcione para todas.

equilibra humedad y aireación en la propagación

Las hojas pueden aportar carbohidratos de la fotosíntesis y auxinas —hormonas vegetales que participan en el crecimiento— que favorecen la formación de raíces; también hacen que la estaca pierda agua. El calor y la humedad del aire, junto con el estado de agua, carbohidratos, nutrientes y hormonas de la planta madre, influyen en el enraizamiento.

1. Ajusta la longitud y el diámetro de la estaca al material que tienes. Retira las hojas que quedarían bajo el sustrato y deja las restantes fuera de la tierra o del agua.

2. Si enraízas en agua, retira las hojas inferiores y mantén el nivel del agua por debajo del follaje para evitar que las hojas sumergidas se pudran. En romero, pasa la ramita a tierra cuando haya desarrollado suficientes raíces.

3. Mantén húmeda la base y comprueba que el sustrato conserve su porosidad después de mojarse.

4. Considera los reguladores de crecimiento —sustancias que se aplican para favorecer o uniformar la formación de raíces— solo como una ayuda posible. La concentración y el resultado varían según la especie y el tratamiento; no compensan un material inadecuado ni condiciones ambientales desfavorables.

Dividir matas y reconocer los órganos subterráneos

Una mata es un conjunto de brotes que crecen alrededor de una planta inicial. Si la especie forma matas y admite esta técnica, levanta una planta desarrollada y sepárala en dos o más partes. Así puedes multiplicarla y ocupar nuevos espacios; algunas perennes maduras también necesitan divisiones periódicas para conservar su salud. Ajusta la fecha al ciclo local.

Ver tambiénCiclos estacionales y calendario

Para dividir pasto limón, cosecha primero la parte verde y luego levanta la mata con una pala de dientes, haciendo palanca cerca de ella. Separa los hijuelos o divisiones para trasplantarlos; una experiencia local trasplantó raíces en otoño o invierno. En la consuelda, obtén plantas nuevas separando porciones de la corona o usando fragmentos de raíz capaces de rebrotar; los fragmentos que ya tienen hojas y raíces son plantines.

Una planta nueva puede originarse de segmentos de tallo o raíz, brotes, hojas, bulbos o divisiones. Un bulbo es un tallo subterráneo corto con hojas o escamas carnosas; un cormo es una base del tallo engrosada, sólida y sin hojas carnosas. Un rizoma es un tallo que crece horizontalmente y produce raíces y brotes; un tubérculo es una parte carnosa y engrosada de un rizoma que almacena reservas y suele tener yemas u ojos. Un estolón también crece horizontalmente y puede formar raíces o brotes en sus nudos o en la punta. Un brote de raíz nace de una raíz verdadera, no de un rizoma ni de un estolón. Distinguir estos órganos ayuda a elegir una pieza con yemas o capaz de emitir raíces: una raíz de reserva no es automáticamente material reproductivo.

Planificar la multiplicación en el predio

Planifica la propagación por etapas si quieres ampliar una plantación y mantener disponibles plantas con las características de una planta madre. Una madre bien establecida puede aportar tandas de esquejes; también puedes comenzar con un núcleo de perennes fáciles de multiplicar, cuyas divisiones, brotes o esquejes ayuden a ocupar otros sectores y reducir compras, aunque completar el sistema toma más tiempo. Las podas de plantas de soporte del policultivo pueden aportar esquejes; una consuelda establecida puede mantenerse como reserva viva, y algunas perennes se expanden por corredores subterráneos. En Uruguay, estas opciones incluyen plantas madre, división de matas y plantación directa en suelo o maceta.

La propagación directa en tierra, maceta o agua permite probar opciones con los recursos disponibles. En Uruguay, los plantines de boniato pueden trasplantarse directamente o enraizarse primero en agua. La frutilla forma hijuelos en verano: pon macetas con tierra junto a ellos, mantenlas húmedas y traslada las plantas nuevas en otoño.

Una secuencia para ampliar

1. Elige unas pocas especies fáciles de multiplicar y define en qué sector podrían establecerse.
2. Conserva una planta madre o un núcleo de reserva y toma esquejes cuando necesites material.
3. Ajusta el tamaño de las tandas al espacio y los cuidados que puedes sostener. En Uruguay, se conservaron estacas de Tithonia durante el invierno como reserva mientras se esperaba confirmar si rebrotaría en primavera; acumular esquejes durante varios meses puede superar el espacio disponible.organiza la producción de vivero por etapas
4. Antes de multiplicar en cantidad, define dónde establecerás las plantas: Rubus puede avanzar 30 m o más con el tiempo, y en Uruguay el aguaymanto puede formar plantas vigorosas desde estacas y expandirse con facilidad.

Leer los resultados con cautela

En la estaquia, influyen la especie y el genotipo —la identidad genética de cada planta—, la edad y el vigor de la planta madre, el tipo de estaca, la época, el ambiente y el tratamiento. Un resultado favorable en un ensayo no predice lo que ocurrirá con otro lote, incluso de la misma especie. Si una tanda falla, ese resultado por sí solo no indica qué factor influyó.

Casos

En la región

En Uruguay se menciona agosto en menguante como momento para obtener esquejes. También se propaga el yacón desde estacas o partes subterráneas.

Las prácticas incluyen hijuelos de alcaucil y banana, y estacas o divisiones de pasto elefante. También se han usado estacas de fisalis, geranio, mioporo, ciruelo y parra; un esqueje de geranio prendió en suelo muy compactado y sin riego, una observación puntual que no garantiza el mismo resultado en otros sitios.

Entre las especies nativas se propagan por estacas el Caaobetí y el sauce criollo; por brotes de raíz, el sapirandí y el Tarumán; y por gajos o estacas, el Higuerón, la murta y la lantana. Para la siguiente plantación, conserva material sano: los dientes de ajo de cabezas cosechadas en diciembre se plantan en abril, mayo o junio, y la papa se planta cuando sus ojos muestran brotes.

Para caña de azúcar se usan segmentos e hijuelos; para menta se han probado esquejes en agua.

Para practicar

Elige una especie que ya tengas y prepara dos grupos pequeños de material de la misma planta madre. Cambia una condición principal a la vez y etiqueta cada grupo. Anota la fecha, la parte usada, su estado, el sustrato y la exposición; revisa periódicamente cuáles siguen vivos y cuándo aparecen raíces o brotes. Compara esos datos antes de decidir si repites el método o amplías la tanda.

prueba cada especie y lote de propagación

Cómo razonarla

Mantén comparables los grupos e interpreta el resultado dentro de esa especie, planta madre, época y sitio. Una diferencia no identifica por sí sola la causa ni garantiza el mismo resultado en otra tanda.

Límites y preguntas abiertas

Lo que todavía no sabemos:

• ¿Qué tipo de estaca y qué momento de corte convienen para cada especie?
• ¿Cuántas raíces o yemas debe conservar cada sección al dividir una mata o una raíz?
• ¿Cómo distingues entre baja viabilidad, dormancia, exceso de humedad y otros problemas cuando un lote no germina o enraíza mal?
• ¿Qué señales confirman que una estaca tiene raíces suficientes para el trasplante cuando no puedes revisarlas?
• ¿Cuánto material puedes retirar de una planta madre sin afectar su recuperación?

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Los eleagnos se describen como transicionales del estrato medio, con separación mínima de 2 m y ciclo LLP. Son siempreverdes, producen bayas en invierno, fijan nitrógeno, admiten poda intensa y se propagan por esqueje; estas características pueden ayudar a valorar si encajan en el sistema.

La cúrcuma puede iniciarse en una maceta con un rizoma y trasladarse cuando empieza a brotar.

El uso de alporquia y otras vías vegetativas en frutales nativos como guabirobeira y cerejeira-do-rio-grande está poco estudiado; también son pocos los trabajos sobre micropropagación de frutales nativos.

Algunas plantas alimenticias no convencionales tropicales se establecen con estacas leñosas directamente en el suelo, en bolsas con tierra preparada o en arena gruesa; entre los ejemplos están ora-pro-nóbis, palma, mandacaru y urtigões. Sin nebulización intermitente, las estacas enraízan con más facilidad en la región amazónica y las zonas tropicales de la Mata Atlántica de Brasil que en el centro, este y sur del país.

También pueden servir un invernadero pequeño, un lecho sencillo o un cajón frío —una estructura baja de protección—, según los recursos disponibles.

Acodo. Permite obtener una planta nueva mientras la rama sigue unida a la planta madre. En arbustos, las ramas que tocan el suelo suelen formar raíces con más frecuencia que en los árboles. Elige una rama que pueda llegar al suelo, dóblala hasta el suelo o una maceta con tierra y entierra y sujeta una parte; para un acodo de punta, cubre solo la punta. En Rubus, puedes sujetar la rama con una piedra y dejar parte de ella fuera de la maceta. Mantenla unida a la planta madre hasta que forme raíces; entonces puedes separarla para trasladarla o dejarla unida para ampliar la plantación.

¿Cuándo conviene la alporquia y cómo se hace?

La alporquia sirve cuando una rama no puede llegar al suelo, sobre todo en plantas leñosas difíciles de enraizar por estaca. Cubre un tramo de la rama con un sustrato orgánico, húmedo y permeable —como suelo bien drenado, esfagno o vermiculita— y envuélvelo con una cubierta impermeable. Cuando veas raíces, corta la rama por debajo de la zona cubierta, retira la envoltura y mantén la planta en una maceta o bolsa hasta que se establezca antes de trasplantarla. Es un método laborioso y de bajo rendimiento.

Sobre esta página: fuentes y datos relacionados

En el fichero de especies. Symphytum officinale (21), Feijoa sellowiana (16), Ipomoea batatas (15), Cymbopogon citratus (10), Lavandula dentata (7), Ficus carica (7), Physalis sp. (7), Fragaria sp. (6), Tithonia diversifolia (6), Saccharum officinarum (6), Plinia cauliflora (5), Hippophae rhamnoides (5), Curcuma longa (5), Musa sp. (5), Salvia rosmarinus (5), Eugenia uniflora (4), Helianthus tuberosus (4), Cenchrus purpureus (4), Eugenia sp. (3), Mentha pulegium (3), Allium sativum (3), Solanum muricatum (3), Eugenia involucrata (2), Ananas comosus (2), Pereskia aculeata (2), Ipomoea pes-caprae (2), Solanum lycopersicum (2), Cnidoscolus aconitifolius (2), Ocimum sp. (2), Myrcianthes cisplatensis (1), Agave sp. (1), Ensete ventricosum (1), Colocasia esculenta (1), Goeppertia allouia (1), Tabernaemontana catharinensis (1), Carya illinoinensis (1), Myoporum laetum (1), Vitis sp. (1), Coleus argentatus (1), Spondias purpurea (1), Salix humboldtiana (1), Combretum fruticosum (1), Luehea divaricata (1), Citharexylum montevidense (1), Cordyline sellowiana (1), Acmella oleracea (1), Vernonanthura phosphorica (1), Costus amazonicus (1), Melothria pendula (1), Cyperus esculentus (1), Myriophyllum aquaticum (1), Matisia cordata (1), Thalia geniculata (1), Aciotis circaeifolia (1), Aciotis purpurascens (1), Artocarpus altilis (1), Ficus americana (1), Moringa oleifera (1), Boerhavia diffusa (1), Passiflora micropetala (1), Piper dilatatum (1), Hovenia dulcis (1), Murraya paniculata (1), Dovyalis hebecarpa (1), Urera caracasana (1), Camellia sinensis (1), Coleus amboinicus (1), Aquarius macrophyllus (1), Pereskia grandifolia (1), Alternanthera sessilis (1), Guadua trinii (1), Aloysia gratissima (1), Alternanthera philoxeroides (1), Armoracia rusticana (1), Dioscorea dodecaneura (1), Dioscorea trifida (1), Musa velutina (1), Gardenia jasminoides (1), Aloysia citrodora (1), Arracacia xanthorrhiza (1), Yucca filamentosa (1), Yucca gigantea (1), Anredera cordifolia (1), Anredera krapovickasii (1), Anredera tucumanensis (1), Kalanchoe fedtschenkoi (1), Kalanchoe pinnata (1), Pteridium aquilinum (1), Dioscorea cayenensis subsp. cayenensis (1), Dioscorea bulbifera (1), Hibiscus rosa-sinensis (1), Abutilon grandifolium (1), Oxalis latifolia (1), Phyllostachys edulis (1), Eugenia pyriformis (1), Camellia japonica (1), Urtica dioica (1), Cissus gongylodes (1), Curcuma zedoaria (1).

Plantas sin ficha identificada. Orégano y cebolla de todo el año (1), Cebollas multiplicadoras, cebollas de papa y chalotes (3), Ñame jinenjo (1), Manzana de tierra o yacón (4), Cebolla egipcia caminante (1), Áster lanceolado (2), Vara de oro (2), Ciruelos, avellanos y serbales de junio (2), Rubus, incluidos groselleros y frambuesas (8), Alcaucil o alcachofa (4), Fisalis o aguaymanto (7), Geranio y geranio citronela (3), Membrillero (3), Morera y mora blanca (4), Higuerón, lantana, murta y romerillo (1), Nirá y ajo silvestre (1), Eryngium campestre y funcho (1), Pupunha (1), Carquejinha y Pectis brevipedunculata (1), Kudzu común (1), Maniva de mandioca (1), Transparente (nombre común sin identificación adicional) (1), Agua y manto (nombre común sin identificación adicional) (1), Salvias (1), Kiwi, habas y aromáticas varias (1), Dama-da-noite, Nopalea cochenillifera y Opuntia ficus-indica (1), Tubérculo pequeño no identificado (1).

En otros temas. Manejo del vivero (4), Implantación por etapas (2), Densidad y espaciamiento (1), Productividad y rendimientos (1), Aprendizaje práctico en campo (1), Servicios ecosistémicos y conservación (1), Control de malezas y plantas expansivas (1), Plantas invasoras y riesgos de expansión (1), Evaluación del establecimiento (1).

Qué se dejó fuera (2 puntos). programa de encuentro sin información técnica sobre el método (1); inoculación de hongos en troncos, fuera de la propagación vegetal del subtema (1).

De dónde sale esto. 340 afirmaciones de 81 fuentes. Evidencia: afirmacion general 50%, experiencia directa 32%, estudio o medicion 6%, tabla o referencia 5%.

• Inti Sanguinet: 163 afirmaciones (70 obras o vídeos)
• Raseira et al. (Embrapa Clima Temperado): 52 afirmaciones (Raseira et al. (Embrapa Clima Temperado) (2004), Espécies frutíferas nativas do Sul do Brasil (Documentos 129))
• Dave Jacke con Eric Toensmeier: 49 afirmaciones (2 obras o vídeos)
• Valdely Ferreira Kinupp y Harri Lorenzi: 25 afirmaciones (Valdely Ferreira Kinupp y Harri Lorenzi (2014), Plantas alimentícias não convencionais (PANC) no Brasil)
• INIA, OPS y UdelaR: 19 afirmaciones (INIA, OPS y UdelaR (2008), Alimentos en la huerta)
• INIA Las Brujas: 14 afirmaciones (INIA Las Brujas (2024), 11.º Encuentro Nacional sobre Frutos Nativos (Serie de Actividades de Difusión 804))
• DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay): 9 afirmaciones (DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay) (2014), Guía de identificación de especies arbóreas nativas de Uruguay)
• Ben Falk: 6 afirmaciones (Ben Falk (2024), The Resilient Farm and Homestead (edición revisada y ampliada))
• Vignale, González y Machado (CTM Salto Grande y Facultad de Agronomía, UdelaR): 1 afirmaciones (Vignale, González y Machado (CTM Salto Grande y Facultad de Agronomía, UdelaR) (2020), Frutales nativos presentes en la región de Salto Grande (2.ª ed.))
• Eric Toensmeier: 1 afirmaciones (Eric Toensmeier (2016), The Carbon Farming Solution)
• PermaDynamics: 1 afirmaciones (PermaDynamics, Syntropic Food Forest Design Reference)

Fuentes de esta página

• Inti Sanguinet: 7 obras o vídeos, 19 obras o vídeos, 17 obras o vídeos, 34 obras o vídeos, 5 obras o vídeos, 57 obras o vídeos, 14 obras o vídeos
• Raseira et al. (Embrapa Clima Temperado) (2004), Espécies frutíferas nativas do Sul do Brasil (Documentos 129): p. 57, p. 58, p. 59, p. 65, p. 66, p. 67, p. 68, p. 60, p. 63, p. 64
• INIA, OPS y UdelaR (2008), Alimentos en la huerta: p. 28, p. 54, p. 65, p. 149, p. 205, p. 206, p. 70, p. 79, p. 80, p. 143, p. 63
• INIA Las Brujas (2024), 11.º Encuentro Nacional sobre Frutos Nativos (Serie de Actividades de Difusión 804): p. 36, p. 37, p. 40
• Dave Jacke con Eric Toensmeier (2005), Edible Forest Gardens, Vol. 2: p. 324, p. 442, p. 68, p. 147
• Valdely Ferreira Kinupp y Harri Lorenzi (2014), Plantas alimentícias não convencionais (PANC) no Brasil: p. 15, p. 14, p. 302, p. 159
• Ben Falk (2024), The Resilient Farm and Homestead (edición revisada y ampliada): p. 182, p. 184
• Vignale, González y Machado (CTM Salto Grande y Facultad de Agronomía, UdelaR) (2020), Frutales nativos presentes en la región de Salto Grande (2.ª ed.): p. 31
• Dave Jacke con Eric Toensmeier: 2 obras o vídeos
• Eric Toensmeier (2016), The Carbon Farming Solution: p. 14
• DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay) (2014), Guía de identificación de especies arbóreas nativas de Uruguay: p. 26, p. 62, p. 78, p. 84, p. 94, p. 120, p. 124, p. 126, p. 136
• PermaDynamics, Syntropic Food Forest Design Reference: p. 7