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Lógica del bosque

Plantas invasoras y riesgos de expansión

evaluarSe apoya en recomendaciones generales

El riesgo de expansión depende de la combinación entre cómo se reproduce y dispersa una planta, las oportunidades que ofrece el sitio y la presión de propágulos; el origen por sí solo no lo determina. Para elegir y manejar especies, conviene partir de registros locales, anticipar las vías de escape y escoger entre evitar, ubicar o contener la planta según el daño posible y la capacidad de sostener el manejo.

Esta página responde 3 preguntas
9 términos clave
  • propágulo: Semilla u otra unidad capaz de originar una planta.
  • estolón: Tallo que crece sobre el suelo y puede formar una nueva planta en sus nudos.
  • rizoma: Tallo subterráneo que puede producir nuevos brotes.
  • chupón: Brote que nace desde la base de una planta o de sus raíces.
  • tubérculo: Tallo subterráneo engrosado que almacena reservas y puede originar nuevos brotes.
  • naturalización: Proceso por el que una planta introducida forma poblaciones que se mantienen y reproducen sin cultivo continuo.
  • nicho: Conjunto de condiciones y recursos que una especie puede ocupar y aprovechar en un sitio.
  • anillado: Retiro de una franja continua de corteza alrededor del tronco de un árbol.
  • renoval: Planta joven que nace de una semilla o vuelve a crecer.

Antes de empezarObservación e inventario del sitio

Decide si incorporas una planta, dónde la ubicas y cómo la contendrás según su forma de propagación, las condiciones del sitio y las consecuencias de que salga del área prevista. Primero distingue cómo se extiende de si causa daño; luego evalúa las fuentes cercanas y el manejo que puedes sostener.

Distinguir expansión, dispersión e invasión

Una planta es expansiva si se multiplica con vigor por rizomas, estolones u otro crecimiento vegetativo; dispersiva, si sus semillas se propagan rápido, a veces lejos por viento o animales; y persistente, si resiste los intentos de erradicarla. Oportunista suele describir a una especie expansiva, dispersiva o ambas que aprovecha los recursos disponibles; puede ser nativa o exótica. Una planta que avanza bajo tierra por rizomas es expansiva: eso indica cómo se extiende, pero no determina su impacto. Confundir estos rasgos con un juicio de daño puede ocultar la vía de propagación o la dificultad de retirarla.

Una invasión ecológica es una secuencia: llegan propágulos a un sitio nuevo, se establecen y luego se expanden. Una semilla que llega pero no logra establecerse no completa esa secuencia. Tampoco basta con que una especie sea exótica o se naturalice: algunas poblaciones introducidas se mantienen bajas y estables durante mucho tiempo sin causar desequilibrios significativos. El origen indica cómo pudo llegar, pero por sí solo no demuestra que cause un impacto.

«Invasora», «oportunista» y «maleza» no son etiquetas intercambiables ni tienen un alcance único: dependen del criterio, el sitio y, en algunas clasificaciones, las normas vigentes. Un marco puede llamar invasora a una especie exótica que se establece, se expande y causa impactos negativos; otro puede preferir oportunista para destacar que el resultado depende de las condiciones que aprovecha. Para decidir, describe su comportamiento en tu lugar y el daño posible.

Reconocer cómo llega y qué facilita su establecimiento

Una planta se establece cuando llegan propágulos —semillas u otras unidades capaces de reproducirla— y el sitio les permite crecer. Importan cuántos llegan y con qué frecuencia, además del clima, el suelo, el relieve, la luz, el agua y las interacciones con la vegetación residente. La resistencia del sitio es su capacidad para dificultar ese establecimiento y depende tanto de esas condiciones físicas como de la riqueza y composición de los seres vivos que ya lo ocupan.

¿Por qué una forrajera alta mal adaptada puede abrir espacio?

En ciertos ambientes tropicales, una forrajera alta que se adapta mal puede dejar el suelo descubierto y facilitar el establecimiento de otras plantas.

Las plantas pueden llegar porque alguien las introduce o transporta, intencional o accidentalmente, o por viento, animales, caminos y agua. Para reconocer la vía, observa dónde aparecen los primeros ejemplares y qué fuentes y trayectos los conectan con el sitio: por ejemplo, si hay plantas que producen semillas cerca o una ruta por la que puedan llegar.

La tala, la contaminación, el pastoreo y las aperturas pueden cambiar los recursos disponibles y reducir la resistencia del sitio. Al dañar o retirar plantas residentes, por ejemplo, puede quedar más luz, agua o nutrientes para otras. La perturbación puede facilitar la expansión, sobre todo si hay propágulos cerca, pero no es un requisito universal: también se han registrado establecimientos exitosos en hábitats relativamente poco perturbados.

¿Qué puede impulsar la expansión de arbustos en pastizales?

Se ha relacionado con cambios globales de temperatura y de composición atmosférica, y localmente con el sobrepastoreo y la introducción de especies arbóreas y arbustivas.

En paisajes fragmentados o perturbados, algunas plantas invasoras pueden aumentar junto con ciertas especies nativas y contribuir a reducir otras. Esto puede cambiar la composición y estructura del bosque, la luz que llega al sotobosque y procesos como la descomposición de materia orgánica. Que aumente el número de plantas en un área no basta para saber cómo cambia la comunidad: importa cuáles aumentan y cuáles disminuyen.

Si encuentras un foco, anota qué recursos parece aprovechar la planta, cómo pudieron llegar sus propágulos, qué puede transportarlos, cuánto terreno ocupa y cuándo y cómo ocurrieron las perturbaciones recientes. En cada revisión, usa el mismo croquis para comparar el área ocupada y los lugares donde aparecen nuevos ejemplares; así podrás reconocer una vía de expansión y decidir qué vigilar o evitar trasladar. Añade los datos a la.

diagnostica y vigila con señales y registros

Ver tambiénObservación e inventario del sitio

Especies registradas en Uruguay: una alerta para revisar el predio

En Uruguay, presta especial atención al ligustro (Ligustrum lucidum) y la espina de Cristo (Gleditsia triacanthos). Están entre los árboles exóticos de mayor riesgo para los bosques: pueden dominar sectores, formar bosques de una sola especie y desplazar localmente a especies nativas. Su crecimiento rápido, potencial reproductivo y tolerancia ambiental contribuyen a esa capacidad. Si alguna crece en tu predio o cerca, evalúa la posibilidad de escape y sus efectos sobre el bosque vecino.

¿Dónde se registraron ligustro y espina de Cristo?

Aparecieron sobre todo en bosques ribereños y de parque. El ligustro también se registró, en menor medida, en bosques serranos, donde la espina de Cristo fue poco frecuente. Las áreas del sur, suroeste y oeste mostraron los mayores niveles de invasión; las del centro y sureste, niveles intermedios; y las del norte y noreste, niveles menores al momento del estudio.

Los registros nacionales orientan qué buscar, pero no confirman qué está presente en un predio ni si se expande allí. Recorre el lugar y sus alrededores, identifica qué especies hay, observa si producen semillas u otros propágulos y busca renovales o escapes fuera del área plantada.

¿Qué otras leñosas exóticas aparecen en registros uruguayos?

Aloysia gratissima se describe como común en ambientes serranos, ribereños y campestres, y suele comportarse como invasora. El Inventario Nacional Forestal de 2009 a 2016 identificó 19 especies exóticas leñosas en bosques de Uruguay. Sus cuadros incluyen Acer negundo, Acacia longifolia, Fraxinus lanceolata, Ligustrum sinense, Melia azedarach, Morus alba, Pinus spp., Pittosporum undulatum, Populus alba, Salix spp., Spartium junceum, Ulex europaeus, Ulmus spp., Cotoneaster spp., Pyracantha sp. y Rubus ulmifolius. Entre las leñosas exóticas frecuentes se mencionan además fresnos (Fraxinus spp.), mora (Morus alba), paraíso (Melia azedarach) y sauces (Salix spp.).

Elegir qué introducir y dónde

Antes de plantar, evalúa cómo se reproduce y dispersa la especie, cuánto vigor y persistencia muestra y si el sitio le ofrece condiciones adecuadas. En un ambiente favorable puede ocupar más espacio del previsto y exigir manejo durante mucho tiempo. Considera su abundancia local, la cercanía de áreas naturales, tu capacidad para sostener el manejo y si una especie nativa puede cumplir una función semejante. Para reconocer escapes, parte del inventario del predio.

evalúa la expansión antes de incorporar una planta

Ver tambiénObservación e inventario del sitio

Una planta útil también puede ser una molestia si sus semillas viajan con el viento o los animales, sus frutos atraen fauna que las dispersa o su expansión alcanza jardines vecinos. Cosecharla o atraer fauna no elimina ese riesgo; considera qué podría ocurrir si sale del área prevista y quién más podría verse afectado.

Las plantas muy expansivas pueden cubrir suelo desnudo o ayudar a recuperar un sitio degradado, pero en un jardín forestal pueden invadir otros cultivos y volverse difíciles de manejar. Decide según el objetivo del lugar y las consecuencias de que escape: lo que sirve para cubrir un terreno alterado puede interferir con un policultivo o extenderse a jardines cercanos.

En una espiral de hierbas en Uruguay, la comparación con la gramilla sirvió para valorar la expansión relativa de una planta en el lugar.

¿Qué molestias conviene comparar al seleccionar especies?

Registra por separado la dispersión por semillas; la expansión por rizomas; la persistencia; las enredaderas vigorosas; las espinas; los pelos que irritan la piel; el polen que puede causar alergias; y la alelopatía, es decir, sustancias que pueden dificultar el crecimiento de otras plantas. Una especie puede reunir varias de estas molestias.

¿Qué muestran ejemplos de jardines forestales templados fríos?

En tablas de Norteamérica, especies útiles también muestran rasgos de expansión, dispersión o persistencia: Elaeagnus angustifolia y E. umbellata tienen frutos comestibles y se dispersan por semillas; Akebia quinata es expansiva y dispersiva; Aegopodium podagraria y Campanula rapunculoides suman persistencia; y Dioscorea bulbifera combina expansión con tubérculos comestibles. También figuran nativas expansivas, como Lactuca pulchella, Smilax, frambuesas y rosas. Estos ejemplos ayudan a leer una matriz, pero no determinan el riesgo local en Uruguay.

¿Qué escapes se describen en climas tropicales y subtropicales?

En Brasil se describen escapes de ornamentales y plantas alimentarias, como Triphasia trifolia y la bananeira-ornamental; Bidens pilosa aparece ampliamente naturalizada en regiones tropicales y subtropicales. En ambientes agrícolas se citan malezas como Ipomoea quamoclit y Amaranthus deflexus; en ambientes acuáticos, Alternanthera philoxeroides puede formar islas flotantes en embalses de Florida. Son regiones y condiciones diversas: sus clasificaciones no se trasladan automáticamente a Uruguay.

Puedes elegir una política de selección según el nivel de precaución que buscas y el entorno.

PolíticaCuándo puede convenir
Excluir todas las especies con antecedentes o riesgo oportunista.Si priorizas la mayor precaución frente a la expansión.
Aceptar especies con potencial oportunista, pero excluir las ya reconocidas como tales.Si quieres admitir algunas opciones inciertas y evitar las que ya tienen antecedentes locales.
Aceptar las expansivas y excluir las dispersivas por semillas.Si distingues entre expansión dentro del área y dispersión fuera de ella.
Admitir oportunistas que ya estén presentes en el vecindario y no introducir otras nuevas en la localidad.Si basas la selección en lo que ya está establecido cerca.

Antes de incorporar una especie, consulta listas locales de invasoras y revisa sus vías de dispersión, sobre todo si aún no está establecida en la región, plantarás cerca de un área natural saludable o podría afectar a vecinos. Una lista de vigilancia también puede ayudarte a detectar molestias, persistencia o toxicidad.

¿Qué enseña el uso de Acacia longifolia en regeneración?

En Uruguay se incorporó Acacia longifolia, una especie exótica muy cuestionada localmente, en una experiencia de regeneración manejada según los objetivos del lugar y valorada como impresionante. Esa valoración no establece cuál será el riesgo en otro predio.

Contener la expansión desde la vía de propagación

Antes de elegir un método, identifica cómo se reproduce la planta. Las semillas viajan con el viento, el agua, los animales o el movimiento de materiales; los rizomas, raíces, estolones, chupones y tubérculos pueden extenderla bajo tierra o desde fragmentos. Si cortas raíces que rebrotan, puedes multiplicarla en vez de controlarla. El crecimiento vigoroso también puede cerrar el paso a otras plantas y complicar un policultivo.

¿Qué plantas ilustran expansión vegetativa y persistencia?

Las mentas avanzan por raíces y pueden competir con hierbas. Algunos bambúes rastreros se extienden por rizomas o chupones, mientras que los bambúes de mata crecen de otra manera. Algunas variedades de Urochloa decumbens pueden invadir líneas de cultivo; el capim-mombaça crece en matas. También se describen como difíciles de controlar el kikuyu, el topinambur, algunas especies de girasol perenne y el ñame chino en el sur de su área descrita. Árboles que producen chupones y arbustos como frambuesas y zarzamoras pueden formar matorrales que interfieren con otros cultivos. Se considera probable que las plantas de crecimiento rápido se expandan antes, pero hay poca información sobre cuándo empiezan a producir chupones muchas especies leñosas de más de 60 cm. La consuelda puede rebrotar desde fragmentos de raíz y, en algunas formas, propagarse por semilla; el motocultor puede repartir los fragmentos.

Elige la contención según la vía de expansión. Una barrera enterrada puede frenar rizomas, pero no detiene semillas; una franja segada o un pavimento pueden servir contra algunas plantas rastreras si se mantienen. Si el crecimiento sigue afectando otros objetivos, cambia la ubicación o reserva un espacio donde pueda crecer sin interferir.

OpciónCuándo puede convenirLímite que debes considerar
Barrera físicaPara contener una planta que avanza por rizomas.Debe ajustarse a la especie y mantenerse; no controla la dispersión por semillas.
Franja segada o pavimentoPara frenar algunas plantas rastreras en un borde o camino.La siega debe continuar; el pavimento no contiene todas las especies.
Barrera vegetal o espacio aisladoSi la planta puede crecer en un área propia o junto a plantas que dificulten su avance.La eficacia depende de las especies y del diseño; también exige vigilancia.
Hábitat menos favorableSi puedes ubicarla en suelo más seco o infértil, con más sombra o temperaturas frescas.Puede frenar el crecimiento, pero no detener por completo la expansión.
¿Qué límites tienen las barreras en el terreno?

Los caminos compactados pueden frenar rizomas de especies menos vigorosas; una zanja puede fallar si la planta crece por debajo y vuelve a salir al otro lado. Se han descrito pavimentos que contienen muchos rizomas y bambú que reaparece al otro lado de una carretera. La barrera vegetal también varía: se han reportado plantaciones densas de consuelda, ajenjo o Coprosma repens, y setos de pino o ciprés para contener bordes de zarzamora.

Una barrera antirrizomas solo funciona si forma una línea continua, resistente y revisable. Los rizomas pueden pasar por una unión abierta, sobre un borde cubierto con mantillo o por un punto débil junto a una roca. Recorre el perímetro y revisa las uniones en primavera y otoño; anota cualquier brote que aparezca fuera de la barrera.

¿Qué profundidad y materiales se indican para las barreras?

Para muchas hierbas perennes se indican barreras de 30–45 cm; rizomas muy vigorosos, como los de algunos bambúes, pueden requerir 60–100 cm o más. La especie y el suelo cambian la profundidad necesaria, y una barrera más profunda y duradera suele exigir más trabajo o costo. Se menciona polietileno de alta densidad de al menos 1,5 mm; las láminas de fibra de vidrio pueden agrietarse y la madera deteriorarse o dejar pasar rizomas por sus juntas. Mantén el borde superior al menos 5 cm por encima del mantillo.

¿Cómo trazar y unir una barrera continua?

Haz curvas suaves, evita esquinas pronunciadas y puntos donde las rocas puedan presionar la barrera. Solapa las uniones al menos 30 cm y séllalas sin dejar huecos.

Si los rizomas pueden entrar desde fuera del área, prevenir su llegada reduce la necesidad de un control permanente: instala el jardín en otro lugar, evita esa planta o diseña un espacio donde crezca sin competir con tus otros objetivos. Tras una perturbación, ocupa pronto el suelo disponible con las plantas previstas para esa etapa y limita así las oportunidades de establecimiento de otras especies.

Al retirar una planta, evita picar o triturar raíces que puedan rebrotar; no uses como acolchado frutos o semillas viables de especies problemáticas. Ten en cuenta que una rama viva de sauce u otra planta que enraíza con facilidad puede establecerse donde la traslades.

Antes de volver a ocupar el sitio, observa por qué prosperó la planta y cómo llegó. Anota el tamaño del área ocupada, las condiciones que aprovecha, qué pudo transportar sus propágulos y qué perturbación reciente abrió espacio. Si no atiendes esas condiciones, retirar la planta puede dejar disponible el mismo nicho para otra expansión.

¿Qué casos muestran persistencia frente al control?

Algunas plantas ya establecidas han resistido los métodos disponibles. En paisajes dominados por poligonácea japonesa, celastrina oriental e hiedra venenosa, se consideró cuidadosamente un herbicida como último recurso, después de valorar alternativas sin químicos.

Controlar, monitorear y adaptar el manejo

Cuando un foco recién se establece, puede ser viable erradicarlo localmente con arranque manual u otros métodos. Para exóticas leñosas adultas en bosques de Uruguay, se han combinado métodos mecánicos —tala, perforación del tronco o anillado— con métodos químicos y control posterior de renovales. Planifica revisiones periódicas: tratar una sola vez los ejemplares visibles puede dejar rebrotes o nuevas plantas que mantengan la invasión.

ajusta la respuesta al riesgo

¿Qué iniciativas uruguayas combinaron métodos de control?

En tres iniciativas rurales de las Sierras del Este y la Cuenca Sedimentaria del Oeste se controlaron acacias, eucaliptos, acacia negra, paraíso, pinos y Pyracantha mediante anillado o tala, con aplicación de herbicida para evitar el rebrote.

Antes de abrir o ralear un bosque, considera si las exóticas cercanas pueden aprovechar la luz y el espacio nuevos. La resistencia biótica es la capacidad de una comunidad de limitar el establecimiento de otras especies; puede disminuir cuando cambia la estructura del bosque. Si hay árboles que producen semillas cerca, o aves que las transportan desde más lejos, las picadas y los raleos pueden facilitar la entrada de exóticas. Limita los claros grandes, traza picadas angostas bajo un dosel que reduzca la luz y vigila con más intensidad los renovales después de intervenir.

¿Cómo influye la intensidad del raleo?

En árboles que rebrotan desde la cepa, reducir el número de varas puede modificar menos la estructura del bosque que retirar ejemplares completos. Cortar varios árboles contiguos puede abrir un claro mayor.

El ganado puede dispersar semillas y consumir plántulas. Puede transportar semillas de acacia negra (Gleditsia triacanthos), incluso en el estiércol, y también pisar o comer renovales. El efecto depende de la especie, la carga y el momento y frecuencia del pastoreo, y de qué tan apetecibles sean las invasoras frente a las nativas. Observa si hay árboles con semillas, por dónde pasa el ganado y qué ocurre con los renovales después; así distinguirás si el pastoreo dispersa, controla o hace ambas cosas.

¿Cómo reducir el transporte de propágulos al mover animales?

Si mueves animales desde un potrero invadido hacia otro sin exóticas, un área previa de desbaste, sin árboles adultos que produzcan semillas, puede reducir el transporte de propágulos. Aún falta determinar cuánto debe durar esa etapa y qué régimen de pastoreo puede controlar renovales sin perjudicar la regeneración de plantas nativas.

Con ligustro, excluir el ganado no garantiza frenar la invasión si hay fuentes de semillas cerca. En sectores de Uruguay se registraron aumentos de renovales y dominancia en el estrato bajo tras exclusiones prolongadas; también se registró expansión tras tala y exclusión, y regeneración después de abrir el dosel en el bosque de barrancos de Melilla. En un monte parque estudiado, durante el período observado no disminuyó el número total de ligustros ni el de las plantas mayores de 5 cm. Por eso, evalúa la respuesta con registros de renovales, rebrotes y cantidad de plantas, no solo por las señales de consumo. Si excluyes el ganado para favorecer la renovación del monte, vigila también las exóticas.

Ver tambiénDiagnóstico y vigilancia

Plantilla: evaluar una especie antes de incorporarla

  • Especie e identificación confirmada:
  • Función que se busca cumplir:
  • Formas de reproducción y dispersión conocidas:
  • Fuentes de propágulos cercanas y rutas posibles:
  • Presencia de renovales o escapes fuera del área prevista:
  • Lugares receptores cercanos que podrían verse afectados:
  • Alternativas que podrían cumplir una función semejante:
  • Manejo y contención que puedes sostener:
  • Opción elegida y señales que motivarían revisar la decisión:

Casos

Más ejemplos
  • En Nueva Inglaterra, algunos hábitats llegaron a estar más dominados por madreselva asiática, arce de Noruega y renoutria japonesa. En Virginia, el kudzu ilustra una expansión marcada; más al norte, la madreselva asiática avanza con menos exuberancia.
  • En bordes y fragmentos forestales de América del Norte, algunas enredaderas sombrean árboles jóvenes y adultos.
  • En paisajes degradados de América del Norte, plantaciones de Elaeagnus junto a caminos facilitaron la dispersión de semillas por aves.
  • En una granja europea de clima templado húmedo, controlar Rubus tricolor permitió la resiembra de otras plantas.
  • En una granja de Carolina del Norte, cultivar mentas agresivas en una isla de estanque limitó su alcance.
  • En una parcela de diseño de América del Norte templada y fría, identificar parches de knotweed japonés permitió cubrir las áreas alteradas.
  • En ranchos de Estados Unidos, el pastoreo rotacional puede frenar plántulas de mezquite aunque el ganado también disperse semillas.
  • En el sur de Brasil, los efectos de la barrelhera junto a un bananal sobre el cultivo pueden variar.

Donde los enfoques difieren

Si evalúas el goumi (Elaeagnus multiflora) en regiones templadas frías donde ya hay otros Elaeagnus, algunas interpretaciones recomiendan cautela por su posible comportamiento oportunista. Otras consideran discutida la atribución de invasión a esas especies, dado el posible papel de plantaciones masivas y ambientes perturbados. Esa diferencia puede inclinar la decisión entre excluirlo o ensayarlo con seguimiento local.

Algunas evaluaciones califican los kiwis resistentes como invasores y otras no han observado una dispersión fácil. La decisión de incorporarlos depende de su comportamiento en el entorno donde los plantarías.

Para barreras antirrizomas de hierbas perennes, las recomendaciones generales varían entre 30–45 cm y 30–50 cm. La especie y el suelo condicionan cuál profundidad elegir.

Para manejar ligustro con ganado, algunas propuestas contemplan pastoreo continuo con cargas bajas o cargas altas concentradas; otra postura sostiene que una intervención puntual no basta. La elección depende de la respuesta de los renovales y de la regeneración de nativas.

En la región

En Uruguay, las estrategias nacionales identifican las invasiones como una amenaza para la biodiversidad y los bosques nativos; en una encuesta a productores ganaderos, solo una minoría señaló las invasiones como un cambio observado en el bosque. Son marcos y percepciones distintos, no una medida de la extensión de la invasión en un predio.

Para practicar

  1. Elige una especie presente o considerada para el predio. En un croquis, marca sus ejemplares reproductivos, caminos, cursos de agua y otros trayectos posibles. Recorre los bordes conectados y registra si encuentras renovales fuera del área prevista; compara esos puntos con sectores sin una fuente cercana conocida.
Cómo razonarla

Usa el contraste entre fuentes, rutas y sitios receptores para estimar dónde conviene evitar una introducción y dónde hace falta revisar escapes. Si los registros no permiten distinguir una vía, anótala como incertidumbre.

  1. En un borde con una planta establecida, delimita en el croquis el interior del parche, el perímetro y el área exterior. En revisiones sucesivas, registra por separado brotes, plántulas, rebrotes y nuevos puntos de presencia; si hay ganado, anota también las señales de consumo y por dónde transita.
Cómo razonarla

Compara las señales de propagación con las de consumo o daño. Decide si la medida actual mantiene la planta dentro del área prevista o si necesitas cambiar su ubicación o el método de control; no tomes la defoliación como único indicador de reducción.

Límites y preguntas abiertas

Las clasificaciones no sustituyen la identificación de la planta ni la comprobación de los requisitos vigentes en tu localidad. Confirma ambos aspectos antes de trasladar o eliminar material.

Lo que todavía no sabemos:

  • ¿Qué especies plantadas o espontáneas de mi zona pueden expandirse fuera del área prevista o desplazar a otras? Los registros nacionales y regionales orientan, pero se necesita un inventario vigente por localidad y observar el predio y su vecindario.
  • ¿Cómo retiro, traslado o elimino restos de plantas invasoras sin dispersar semillas, raíces o fragmentos? Faltan protocolos para restos con semillas, frutos, raíces o rizomas viables.
  • ¿Qué diseño de picadas y raleos mantiene la persistencia de distintos bosques uruguayos y reduce la facilitación de exóticas?
  • ¿Qué regímenes de pastoreo controlan renovales de ligustro sin perjudicar la regeneración de plantas nativas?
Relacionado
  • En el sur de Brasil, el nabo forrajero (Raphanus sativus) se cultiva como forraje o abono verde en invierno y primavera, pero puede escapar y naturalizarse; se identifica como la forma silvestre del rabanito cultivado.
  • En São Paulo, el kudzu común se introdujo en 1916; como no florece con el fotoperiodo subtropical, se propaga mediante mudas de corona. Su vía efectiva de propagación puede variar con el clima.
  • En datos de INIA, el ligustro aparece en alrededor del 13 % de los bosques uruguayos y la espina de Cristo en alrededor del 7 %. Esos porcentajes describen presencia en bosques, no determinan por sí solos el riesgo de un predio.
  • Se ha planteado que producir grandes cantidades de propágulos es un requisito previo para una invasión, aunque no se establece un umbral aplicable a cada sitio.
Sobre esta página: fuentes y datos relacionados

En el fichero de especies. Urtica dioica (3), Ipomoea aquatica (2), Sechium edule (2), Bidens pilosa (1), Triphasia trifolia (1), Musa velutina (1), Piper umbellatum (1), Pongamia pinnata (1), Alternanthera philoxeroides (1), Amaranthus deflexus (1), Cyperus esculentus (1), Moringa oleifera (1), Agave americana (1), Limnocharis flava (1), Calopogonium mucunoides (1), Ricinus communis (1), Erigeron bonariensis (1), Mentha sp. (1), Dioscorea polystachya (1), Cenchrus clandestinus (1), Helianthus tuberosus (1), Tussilago farfara (1), Artemisia vulgaris (1), Aquarius macrophyllus (1), Reynoutria japonica (1), Vernonanthura phosphorica (1), Symphytum × uplandicum (1), Solidago odora (1), Bidens cynapiifolia (1), Indigofera hirsuta (1), Spergula arvensis (1), Brassica rapa (1), Cytisus decumbens (1), Achillea millefolium (1), Elaeagnus multiflora (1), Schinus terebinthifolia (1), Diplotaxis erucoides (1), Eucalyptus sp. (1), Leucaena leucocephala (1), Asclepias syriaca (1), Euphorbia esula (1), Morus sp. (1), Salix sp. (1), Tagetes filifolia (1), Conium maculatum (1), Anthriscus sylvestris (1).

Plantas sin ficha identificada. Albizia julibrissin; Cytisus scoparius; Elaeagnus angustifolia; Elaeagnus umbellata; Berberis spp. (1), Acer platanoides; Alliaria petiolata (1), Dioscorea bulbifera; Thladiantha dubia (1), Lactuca pulchella; Lamium galeobdolon; Fagopyrum cymosum; Smilax bona-nox; Smilax laurifolia; Smilax rotundifolia (1), Aegopodium podagraria; Akebia quinata; Campanula rapunculoides (1), Impatiens walleriana; uva-do-japão; folha-da-fortuna; dama-da-noite (1), Ipomoea quamoclit; Pteridium aquilinum (1), Alternanthera tenella; caruru-de-espinho (1), Pinheirinho-d’água (1), Cardo citado para las praderas argentinas (1), Bambúes (4), Urochloa decumbens; capim-mombaça (1), Girasoles perennes (1), Sonchus spp. (1), Naranjo de los Osages (1), Barrelhera (1), Caragana siberiana (1), Akebia quinata; olivo de otoño (1), Mezquites (2), Árbol de sebo chino (1), Zarzamora espinosa (1).

En otros temas. Marcos institucionales y acuerdos (3), Redes tróficas y fauna beneficiosa (2), Perspectivas sociales y territoriales (2), Contenidos periféricos de las fuentes (2), Cultivos de aceite y uso industrial (1), Compost y enmiendas (1), Selección del material de propagación (1).

Qué se dejó fuera (1 puntos). preferencia personal sin dato de dispersión o impacto que permita evaluar el riesgo (1).

De dónde sale esto. 347 afirmaciones de 26 fuentes. Evidencia: afirmacion general 57%, tabla o referencia 16%, cita de terceros 11%, experiencia directa 6%.

  • Dave Jacke con Eric Toensmeier: 158 afirmaciones (2 obras o vídeos)
  • INIA: 123 afirmaciones (INIA (2022), Oportunidades y desafíos del uso de los bosques nativos integrados a la producción ganadera de Uruguay (Serie Técnica 261))
  • Valdely Ferreira Kinupp y Harri Lorenzi: 27 afirmaciones (Valdely Ferreira Kinupp y Harri Lorenzi (2014), Plantas alimentícias não convencionais (PANC) no Brasil)
  • Inti Sanguinet: 15 afirmaciones (12 obras o vídeos)
  • Eric Toensmeier: 13 afirmaciones (Eric Toensmeier (2016), The Carbon Farming Solution)
  • Ana Maria Primavesi: 3 afirmaciones (Ana Maria Primavesi (s. f.), Manejo ecológico do solo)
  • PermaDynamics; traducción y añadidos de Caetano: 1 afirmaciones (PermaDynamics; traducción y añadidos de Caetano, Especies Sintrópicas – Referencia de diseño de bosque (traducción))
  • PermaDynamics: 1 afirmaciones (PermaDynamics, Syntropic Food Forest Design Reference)
  • Carlos Roberto Franke et al. (orgs.): 1 afirmaciones (Carlos Roberto Franke et al. (orgs.) (2005), Mata Atlântica e Biodiversidade)
  • DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay): 1 afirmaciones (DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay) (2014), Guía de identificación de especies arbóreas nativas de Uruguay)
  • Ben Falk: 1 afirmaciones (Ben Falk (2024), The Resilient Farm and Homestead (edición revisada y ampliada))
  • José Fernando dos Santos Rebello y Daniela Ghiringhello Sakamoto: 1 afirmaciones (José Fernando dos Santos Rebello y Daniela Ghiringhello Sakamoto (2021), Agricultura Sintrópica segundo Ernst Götsch)
  • Embrapa Florestas: 1 afirmaciones (Embrapa Florestas (2006), Sistemas agroflorestais)
  • Embrapa (varios autores): 1 afirmaciones (Embrapa (varios autores) (2023), Adubação verde e plantas de cobertura no Brasil, vol. 1 (2.ª ed.))
Fuentes de esta página
  • Dave Jacke con Eric Toensmeier: 2 obras o vídeos
  • INIA (2022), Oportunidades y desafíos del uso de los bosques nativos integrados a la producción ganadera de Uruguay (Serie Técnica 261): p. 49, p. 50, p. 52, p. 53, p. 54, p. 67, p. 13, p. 51, p. 74, p. 107, p. 15, p. 24, p. 47, p. 55, p. 56, p. 57, p. 58, p. 80, p. 82, p. 85, p. 86, p. 88
  • PermaDynamics; traducción y añadidos de Caetano, Especies Sintrópicas – Referencia de diseño de bosque (traducción): p. 1
  • PermaDynamics, Syntropic Food Forest Design Reference: p. 1
  • Inti Sanguinet, «TALLER Bosques Sintrópicos de Alimentos LIBERADO - Regenera la Tierra con Permacultura & Sintropia» (YouTube): 33:24
  • Eric Toensmeier (2016), The Carbon Farming Solution: p. 14, p. 27, p. 8, p. 17, p. 19, p. 21, p. 20, p. 18
  • Ana Maria Primavesi (s. f.), Manejo ecológico do solo: p. 494, p. 534, p. 278
  • Valdely Ferreira Kinupp y Harri Lorenzi (2014), Plantas alimentícias não convencionais (PANC) no Brasil: p. 86, p. 19, p. 20, p. 23, p. 25, p. 26, p. 27, p. 38, p. 87, p. 89, p. 105, p. 108, p. 124, p. 132, p. 158, p. 161, p. 165, p. 182, p. 184, p. 214, p. 268, p. 298, p. 309, p. 320, p. 353, p. 127
  • Carlos Roberto Franke et al. (orgs.) (2005), Mata Atlântica e Biodiversidade: p. 170
  • Inti Sanguinet, «DOCUMENTAL ''Botánica Inchalá'' - Sintropía Uruguaya & Bosques de Alimento» (YouTube): 11:25
  • DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay) (2014), Guía de identificación de especies arbóreas nativas de Uruguay: p. 38
  • Inti Sanguinet: 3 obras o vídeos, 8 obras o vídeos
  • Ben Falk (2024), The Resilient Farm and Homestead (edición revisada y ampliada): p. 313
  • José Fernando dos Santos Rebello y Daniela Ghiringhello Sakamoto (2021), Agricultura Sintrópica segundo Ernst Götsch: p. 83
  • Embrapa Florestas (2006), Sistemas agroflorestais: p. 184
  • Embrapa (varios autores) (2023), Adubação verde e plantas de cobertura no Brasil, vol. 1 (2.ª ed.): p. 105
  • Dave Jacke con Eric Toensmeier (2005), Edible Forest Gardens, Vol. 1: p. 300

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Especies

Acacia longifoliaAcer negundoAcer platanoidesAegopodium podagrariaAgave americanaAgave sp.Akebia quinataAlbizia julibrissinAlliaria petiolataAloysia gratissimaAlternanthera philoxeroidesAlternanthera tenellaAmaranthus deflexusAmaranthus spinosusAnthriscus sylvestrisApios americanaAquarius macrophyllusArtemisia sp.Artemisia vulgarisAsclepias syriacaAttalea maripaBambusa sp.BambusoideaeBerberis sp.Bidens cynapiifoliaBidens pilosaCampanula rapunculoidesCaragana arborescensCelastrus orbiculatusCeltis sp.Cenchrus clandestinusClaytonia sp.Conium maculatumCoprosma repensCotoneaster sp.Cupressus sp.Cyperus esculentusCytisus decumbensCytisus scopariusCytisus sp.Dioscorea bulbiferaDioscorea polystachyaDiplotaxis erucoidesElaeagnus angustifoliaElaeagnus multifloraElaeagnus sp.Elaeagnus umbellataErigeron bonariensisEuphorbia esulaEuphorbia heterophyllaFagopyrum cymosumFraxinus pennsylvanicaFraxinus sp.Gleditsia triacanthosHelianthus sp.Hovenia dulcisImpatiens wallerianaIndigofera hirsutaIpomoea aquaticaIpomoea quamoclitKalanchoe pinnataLactuca pulchellaLamium galeobdolonLaportea canadensisLeucaena sp.Ligustrum lucidumLigustrum sinenseLigustrum sp.Limnocharis flavaLuffa aegyptiacaMaclura pomiferaMelia azedarachMentha sp.Morus albaMusa velutinaMyriophyllum aquaticumPaspalum notatumPhyllostachys sp.Phytolacca rivinoidesPiper umbellatumPittosporum undulatumPlatonia insignisPongamia pinnataPopulus albaProsopis sp.Pteridium aquilinumPueraria montana var. lobataPyracantha sp.Raphanus raphanistrumReynoutria japonicaRosa sp.Rubus sp.Rubus tricolorRubus ulmifoliusSalix sp.Selenicereus undatusSmilax bona-noxSmilax laurifoliaSmilax rotundifoliaSolidago odoraSonchus sp.Spartium junceumSpergula arvensisSymphytum × uplandicumTagetes filifoliaThladiantha dubiaToxicodendron radicansTriadica sebiferaTriphasia trifoliaTsuga sp.Tussilago farfaraUlex europaeusUlmus pumilaUlmus sp.Vernonanthura phosphoricaVernonia sp.