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Lógica del bosque

Plagas, enfermedades y regulación

aplicarSe apoya en mediciones y ensayos

La sanidad se maneja observando el cultivo y su entorno, previniendo las condiciones que favorecen el problema y dando espacio a la regulación biológica. Si hace falta intervenir, la decisión debe responder a un problema identificado y a un umbral de daño, con el método más dirigido que resulte viable; las recetas y resultados dependen del cultivo, el organismo y el sitio.

Esta página responde 7 preguntas
3 términos clave
  • Feromona: Sustancia química que un organismo libera como señal para comunicarse con otros de su especie.
  • Hongo entomopatógeno: Hongo capaz de infectar y causar enfermedad en insectos.
  • Greening: Enfermedad que afecta a los cítricos.

Ante daño por plaga o enfermedad, decide primero si progresa y amenaza el cultivo. Observa qué parte afecta, cómo cambia y si la planta se recupera; con eso puedes ajustar la respuesta al riesgo y cuidar a los organismos que ayudan a regular el sistema.

Recorrido

  1. Observar antes de decidir — Distinguir señales de daño y decidir cuándo observar más.
  2. Prevenir desde el diseño y el estado del cultivo — Ajustar el diseño y las condiciones del cultivo para reducir riesgos sanitarios.
  3. Higiene, rotación y manejo de restos — Manejar restos, cobertura y rotaciones según el problema que quieres prevenir.
  4. Elegir una respuesta proporcional y dirigida — Elegir y evaluar una respuesta según el riesgo y sus efectos sobre otros organismos.
  5. Ejemplos locales y límites de transferencia — Interpretar experiencias regionales según las condiciones del sitio.

Casos

Relacionado desde otros temas

Si distribuyes plantas hospedantes —plantas de las que se alimenta una plaga—, dispersar los parches de una plaga especialista, que se alimenta de pocas especies, puede dificultar que los encuentre; mantenerlas en bloques puede responder a necesidades de manejo o polinización.

Al decidir el destino de los restos o conservar cobertura, considera su estado y el problema sanitario: un residuo asociado al agente puede mantenerlo, mientras que una cobertura sana puede limitar salpicaduras.

Si consideras un preparado casero, distingue los resultados observados en una situación concreta de su eficacia en otros cultivos y condiciones.

Hay criterios distintos sobre el efecto de la mucuna-preta como cobertura supresora, pero no se especifican condiciones comparables para resolver la diferencia. Comprueba el organismo o problema objetivo y la respuesta del cultivo asociado antes de extender su uso.

La orientación del corte de banano recibe recomendaciones distintas. La información disponible no permite elegir una dirección como regla general; vincula la decisión con el objetivo y las condiciones del corte.

Ante un brote, algunos enfoques admiten una intervención química puntual y dirigida si otras medidas no alcanzan; otros priorizan dejar de aplicar productos y confiar en procesos ecológicos. Retirarlos de forma abrupta puede dejar expuesto un cultivo que ya depende de aplicaciones, mientras que repetirlas puede afectar a otros organismos. Ajusta la respuesta al riesgo y a las alternativas viables del sitio.

En la región

En horticultura protegida uruguaya se han reportado menores costos y carga ambiental asociados al control biológico. En Uruguay están presentes Ceratitis capitata y Anastrepha fraterculus; para manejarlas se describen monitoreo, trampas y trampeo masivo con cebos de proteínas y azúcares. También hay resultados reportados por productores para trampas caseras de mosca de la fruta, sin cifras especificadas.

Las guías locales atribuyen al ajo un efecto repelente, como recomendación y no como eficacia general demostrada. Un programa uruguayo utilizó hongos antagonistas del suelo —que limitan otros organismos— del género Trichoderma.

Para practicar

  1. Elige una zona con daño y otra comparable del mismo cultivo. En ambas anota la etapa del cultivo, el órgano afectado, las señales visibles, cuántas plantas muestran daño y si observas reguladores. Registra la fecha y repite la observación según la velocidad del problema.
Cómo razonarla

Compara la evolución entre las zonas y con el estado habitual del cultivo. Si el daño progresa, afecta una parte importante o coincide con pérdida de vigor, reevalúa el riesgo; si se mantiene localizado y el cultivo se recupera, conserva el registro antes de decidir intervenir.

  1. Después de una intervención, anota qué cambió en el daño y en los organismos beneficiosos del área tratada. Si es posible, compara esos cambios con un área similar sin esa intervención y registra cualquier daño nuevo.
Cómo razonarla

Una reducción de la plaga no basta para evaluar el resultado si también disminuyen sus reguladores o aparecen otros problemas. Usa la comparación para decidir si mantienes, ajustas o abandonas la medida.

Límites y preguntas abiertas

Los resultados no se trasladan automáticamente entre escalas, climas o historiales sanitarios; contrasta cada ajuste con las condiciones de tu sitio y conserva registros que permitan reconocer cambios entre ciclos.

Lo que todavía no sabemos:

  • ¿Qué umbrales de acción están validados para cada combinación de cultivo, organismo y región de Uruguay?
  • ¿Qué requisitos vigentes se aplican en Uruguay a la compra, almacenamiento, uso y descarte de cada producto fitosanitario?
  • ¿Qué controles biológicos disponibles localmente mantienen eficacia suficiente frente a cada plaga o enfermedad y bajo qué condiciones?
Relacionado

La materia orgánica y la vida del suelo se proponen para reducir problemas de hormigas. También se plantea que restablecer la biocenosis (comunidad de organismos que conviven en un ambiente) permitiría recuperar la salud de los cultivos y reducir o abandonar agroquímicos.

Para los fitonematodos (nematodos que atacan plantas) se han propuesto bagacillo de caña, vinaza y otros materiales orgánicos, siempre que no haya raíces parasitadas ni abundancia de quistes. Una recomendación atribuye a la aplicación de 10–15 t/ha de materia orgánica la aparición de depredadores y la reducción de la población de nematodos a una décima parte en pocas semanas. En quiabo, se reportaron menos síntomas de agallas y mayor producción con una hilera de Crotalaria spectabilis por cada dos hileras de cultivo; en maíz con crotalarias, los resultados dependen de usar híbridos resistentes. También se han propuesto combinaciones de crotalarias con braquiarias para contrarrestar su condición de plantas hospedantes de nematodos de las lesiones. Los restos de crotalaria incorporados pueden alterar la población de nematodos y los resultados de ensayos; además, los términos usados para describir si una especie los hospeda no siempre son consistentes.

Al evaluar abonos verdes —plantas cultivadas para luego cubrir o incorporarlas al suelo— contra nematodos, distingue los diseños: en inoculaciones controladas se usa el factor de reproducción FR = Pf/Pi, es decir, población final dividida entre población inicial. En campo, la población inicial puede estimarse con imprecisión por su distribución irregular y porque quedan nematodos en las raíces del cultivo previo. Algunos ensayos cuentan solo los presentes en el suelo o usan otras medidas, por lo que sus resultados no siempre son comparables. También se han señalado pocos estudios especializados sobre plagas y enfermedades de abonos verdes. La rotación puede ser difícil en plantaciones industriales, y una enfermedad nueva puede afectar variedades elegidas cuando aún no estaba presente en la zona.

Más ejemplos
  • En almácigos de cebolla en Uruguay se describió la solarización (cubrir el suelo para calentarlo con el sol) contra podredumbre blanca y nematodos; también se describió una combinación de tratamientos para mancha foliar, sin informar sus resultados.
  • En agroforestería del sur de Brasil se describió un manejo mediante podas y procesos vivos, sin preparados líquidos.
  • En una finca de clima templado húmedo en Europa se reservaron frutos de agracejo para las aves y se cercó el acceso de los conejos.
  • En tabaco sobre suelo rico en nutrientes y materia orgánica se planteó que una planta bien nutrida toleraría una infección vascular, que afecta los conductos internos de la planta; la afirmación no establece una regla general.
Sobre esta página: fuentes y datos relacionados

En el fichero de especies. Zanthoxylum simulans (1).

Plantas sin ficha identificada. Meloidogyne spp. y otros fitonematodos (164), Atta spp. y Acromyrmex spp. (41), Moscas de la fruta: Ceratitis capitata, Anastrepha fraterculus y Drosophila suzukii (20), Crotalaria spp., mucunas, guandu y otras coberturas (268), Frutales y cultivos mencionados en registros de plagas y enfermedades (309), Juglans spp. (nogales) (2), Lupinus albus (tremoço-branco) (1), Helianthus annuus (girasol) y Scaptocoris castanea (1), Crotalaria spp. y Bacillus thuringiensis (2), Canavalia ensiformis y Bemisia tabaci (1), Raphanus sativus, Helianthus annuus y Sclerotinia sclerotiorum (2), Sclerotium spp. (1), Liriomyza spp. (1), Termitas (2), Nematodos fitoparásitos, incluido Pratylenchus brachyurus (5), Azadirachta indica (neem) (1), Crotalaria juncea, Crotalaria paulina, guandú y Thyanta perditor (1), Crotalaria mucronata, Crotalaria ochroleuca y Epicauta atomaria (1), Mucunas y Cercospora spp. (1), Avena blanca y amarilla; Puccinia coronata f. sp. avenae (1), Scaptocoris divergens (1), Arroz, nematodos y pudrición bacteriana del tallo (1), Nicotiana tabacum y Pseudomonas solanacearum (1).

En otros temas. Plantas de servicio (262), Control de malezas y plantas expansivas (86), Integración animal (46), Selección de especies y variedades (41), Contenidos periféricos de las fuentes (22), Conservación y almacenamiento de cosechas (10), Calidad y disponibilidad del agua (2), Cambio climático y resiliencia (1), Principios de diseño (1), Plantas medicinales y aromáticas (1), Casos y experiencias de referencia (1).

Qué se dejó fuera (7 puntos). periférico para este tema: información de procesamiento de fibras que no aporta al manejo sanitario (1); periférico para este tema: diagrama de una trampa sin información textual suficiente para identificar su funcionamiento (1); expectativa futura sin resultado observado (1); referencia incompleta: no identifica la familia de plantas (1); se describe una comparación, pero no se informa su resultado (1); falta el antecedente de la intervención y no puede interpretarse el resultado (1); anécdota sin explicación del cambio de práctica (1).

De dónde sale esto. 1200 afirmaciones de 77 fuentes. Evidencia: afirmacion general 52%, tabla o referencia 15%, estudio o medicion 14%, cita de terceros 6%.

  • Embrapa (varios autores): 455 afirmaciones (Embrapa (varios autores) (2023), Adubação verde e plantas de cobertura no Brasil, vol. 1 (2.ª ed.))
  • Dave Jacke con Eric Toensmeier: 234 afirmaciones (2 obras o vídeos)
  • Inti Sanguinet: 190 afirmaciones (57 obras o vídeos)
  • INIA, OPS y UdelaR: 112 afirmaciones (INIA, OPS y UdelaR (2008), Alimentos en la huerta)
  • Ana Maria Primavesi: 89 afirmaciones (Ana Maria Primavesi (s. f.), Manejo ecológico do solo)
  • Gilsanz (INIA): 25 afirmaciones (Gilsanz (INIA) (2012), Abonos verdes en la producción hortícola (Serie Técnica 201))
  • Juan Millán y Diego Romero (IICA Uruguay): 21 afirmaciones (2 obras o vídeos)
  • INIA Las Brujas: 16 afirmaciones (2 obras o vídeos)
  • Millán, Díaz y Ackermann (OPYPA-MGAP): 14 afirmaciones (Millán, Díaz y Ackermann (OPYPA-MGAP) (2020), Actualización de costos hortifrutícolas)
  • José Fernando dos Santos Rebello y Daniela Ghiringhello Sakamoto: 12 afirmaciones (José Fernando dos Santos Rebello y Daniela Ghiringhello Sakamoto (2021), Agricultura Sintrópica segundo Ernst Götsch)
  • Raseira et al. (Embrapa Clima Temperado): 8 afirmaciones (Raseira et al. (Embrapa Clima Temperado) (2004), Espécies frutíferas nativas do Sul do Brasil (Documentos 129))
  • Eric Toensmeier: 8 afirmaciones (Eric Toensmeier (2016), The Carbon Farming Solution)
  • Ben Falk: 6 afirmaciones (Ben Falk (2024), The Resilient Farm and Homestead (edición revisada y ampliada))
  • I. Siddique et al. (UFSC): 3 afirmaciones (I. Siddique et al. (UFSC) (2017), Agroflorestas agroecológicas do Sul em rede (SAFAS))
  • Walter Steenbock y Fabiane Machado Vezzani (orgs.): 3 afirmaciones (Walter Steenbock y Fabiane Machado Vezzani (orgs.) (2023), Agrofloresta)
  • Embrapa: 2 afirmaciones (Embrapa (2019), Leguminosas na fruticultura (capítulo))
  • Fabiana Mongeli Peneireiro: 1 afirmaciones (Fabiana Mongeli Peneireiro (1999), Sistemas agroflorestais dirigidos pela sucessão natural)
  • DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay): 1 afirmaciones (DINAMA (Ministerio de Ambiente de Uruguay) (2014), Guía de identificación de especies arbóreas nativas de Uruguay)
Fuentes de esta página
  • Inti Sanguinet: 23 obras o vídeos, 4 obras o vídeos, 38 obras o vídeos, 2 obras o vídeos
  • Ben Falk (2024), The Resilient Farm and Homestead (edición revisada y ampliada): p. 130, p. 131, p. 254
  • Gilsanz (INIA) (2012), Abonos verdes en la producción hortícola (Serie Técnica 201): p. 35, p. 72, p. 34
  • José Fernando dos Santos Rebello y Daniela Ghiringhello Sakamoto (2021), Agricultura Sintrópica segundo Ernst Götsch: p. 63, p. 100, p. 98
  • Embrapa (varios autores) (2023), Adubação verde e plantas de cobertura no Brasil, vol. 1 (2.ª ed.): p. 513, p. 50, p. 23, p. 25, p. 26, p. 29, p. 439, p. 440, p. 441, p. 446, p. 447, p. 448, p. 449, p. 452, p. 453, p. 458, p. 460, p. 462, p. 463, p. 465, p. 472, p. 475, p. 476, p. 478, p. 479, p. 480, p. 528, p. 482, p. 491, p. 493, p. 494, p. 495, p. 497, p. 501, p. 518, p. 523, p. 525
  • INIA, OPS y UdelaR (2008), Alimentos en la huerta: p. 48, p. 100, p. 63, p. 138, p. 40, p. 42, p. 47, p. 49, p. 50, p. 68, p. 80, p. 88, p. 146
  • Dave Jacke con Eric Toensmeier (2005), Edible Forest Gardens, Vol. 1: p. 38
  • Juan Millán y Diego Romero (IICA Uruguay): 2 obras o vídeos
  • Millán, Díaz y Ackermann (OPYPA-MGAP) (2020), Actualización de costos hortifrutícolas: p. 23, p. 26, p. 37, p. 50, p. 8, p. 38, p. 49
  • INIA Las Brujas (2019), Frutos nativos (Serie de Actividades de Difusión 789): p. 20
  • Dave Jacke con Eric Toensmeier: 2 obras o vídeos
  • Ana Maria Primavesi (s. f.), Manejo ecológico do solo: p. 57, p. 168, p. 169, p. 184, p. 185, p. 186, p. 187, p. 188, p. 189, p. 202, p. 434, p. 445, p. 446, p. 457, p. 548, p. 563, p. 437
  • INIA Las Brujas: 2 obras o vídeos
  • Raseira et al. (Embrapa Clima Temperado) (2004), Espécies frutíferas nativas do Sul do Brasil (Documentos 129): p. 56, p. 83
  • Eric Toensmeier (2016), The Carbon Farming Solution: p. 8, p. 30

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Temas

Anegamiento y excesos de aguaHumedad y ventilaciónCasos y experiencias de referenciaContenidos periféricos de las fuentesFotosíntesis y balance energéticoRelaciones ecológicasGlosarioCultivos básicos y granosRutas de aprendizajeDiagnóstico y vigilanciaObservar antes de decidirPrevenir desde el diseño y el estado del cultivoHigiene, rotación y manejo de restosElegir una respuesta proporcional y dirigidaEjemplos locales y límites de transferenciaSanidad y riesgosPolicultivos y gremiosCompost y enmiendasMateria orgánica y formación del sueloVida y redes del suelo

Principios

Diagnostica y vigila con señales y registrosPrevén daños y conserva la regulación biológicaAjusta la respuesta al riesgo

Especies

Abelmoschus esculentusAcanthosyris spinescensAchillea millefoliumAchillea sp.Agastache foeniculumAgrostis giganteaAllium sp.Aloe sp.Amaranthus hybridusAmelanchier sp.Arachis pintoiArachis prostrataArmoracia rusticanaArtemisia absinthiumArtemisia dracunculusArtemisia sp.Avena sativaAvena sp.Avena strigosaBasella albaBerberis sp.Bidens pilosaBlephilia sp.Bougainvillea sp.BrassicaceaeBrassica napusBrassica sp.Bromus inermisCajanus cajanCalopogonium mucunoidesCalopogonium sp.Campomanesia sp.Canavalia brasiliensisCanavalia ensiformisCanavalia gladiataCannabis sativaCapsicum sp.Castanea dentataCastanea mollissimaCastanea pumilaCeltis sp.Cenchrus americanusCenchrus ciliarisCenchrus echinatusCentrosema sp.Chenopodium albumChrysanthemum sp.Cicer arietinumCitrullus lanatusCitrus aurantiumCitrus reticulataCitrus × limoniaClinopodium glabellumClinopodium nepetaClitoria fairchildianaCoffea arabicaCoffea sp.Colocasia esculentaCommelina benghalensisCrambe hispanicaCrataegus sp.Crotalaria brevifloraCrotalaria incanaCrotalaria junceaCrotalaria lanceolataCrotalaria micansCrotalaria ochroleucaCrotalaria pallidaCrotalaria paulinaCrotalaria retusaCrotalaria sp.Crotalaria spectabilisCrotalaria trichotomaCrotalaria virgulata subsp. grantianaCroton glandulosusCucumis meloCucumis sativusCunila origanoidesCyamopsis tetragonolobaCynodon dactylonCyperus rotundusDactylis glomerataDaucus carotaDerris sp.Desmodium tortuosumDigitaria erianthaDigitaria sanguinalisDigitaria sp.Dioscorea cayenensisEchinochloa crus-galliEleusine coracanaEleusine indicaEmilia sonchifoliaEquisetum sp.Eragrostis curvulaEragrostis tefEucalyptus gunniiEugenia involucrataEugenia myrcianthesEuphorbia heterophyllaFabaceaeFagopyrum esculentumFaidherbia sp.Feijoa sellowianaFlemingia macrophyllaGalactia sp.Galactia striataGlycine maxGossypium hirsutumGossypium sp.Helianthus annuusHibiscus cannabinusHordeum vulgareHypericum sp.Imperata brasiliensisIndigofera hirsutaIndigofera tinctoriaIpomoea grandifoliaIpomoea trilobaJuniperus communisJuniperus virginianaLablab purpureusLathyrus oleraceusLathyrus sativusLavandula sp.Lespedeza sp.Leucaena diversifoliaLeucaena leucocephalaLeucaena sp.Lilium sp.Linum usitatissimumLolium arundinaceumLolium multiflorumLolium perenneLolium sp.Lophophora sp.Lotus pedunculatusLupinus albusLupinus angustifoliusLupinus luteusLupinus sp.Macroptilium atropurpureumMalus domesticaMalva sp.Matricaria sp.Medicago sativaMegathyrsus maximusMelampodium perfoliatumMelia azedarachMelinis minutifloraMelissa officinalisMentha sp.Micromeria douglasiiMimosa pudicaMonarda sp.Mucuna pruriensMucuna pruriens var. utilisMucuna sp.Murraya paniculataMusa acuminataMusa textilisMyrrhis odorataNeonotonia wightiiNeustanthus phaseoloidesNicotiana tabacumOriganum sp.Origanum vulgareOrnithopus sativusPapaver sp.Paspalum notatumPassiflora edulisPhalaris aquaticaPhalaris arundinaceaPhaseolus vulgarisPhleum pratensePhysalis heterophyllaPinus strobusPlinia caulifloraPlinia rivularisPoa nemoralisPortulaca oleraceaPrunus armeniacaPrunus persicaPrunus salicinaPrunus sp.Psidium cattleianumPsidium guajavaPsophocarpus tetragonolobusPueraria montana var. lobataPycnanthemum sp.Pyrus communisPyrus sp.Raphanus raphanistrumRaphanus sativusRheum × hybridumRibes nigrumRibes odoratumRibes rubrumRicinus communisRosaceaeRosa sp.Roystonea oleraceaRuta graveolensSaccharum officinarumSalvia officinalisSalvia rosmarinusSchinus molleSecale cerealeSenna obtusifoliaSenna occidentalisSesamum indicumSesbania bispinosaSesbania sp.Setaria italicaSetaria parvifloraSetaria sphacelataSida glazioviiSida rhombifoliaSolanum lycopersicumSolanum melongenaSolanum tuberosumSolidago odoraSorghum bicolorSorghum bicolor × S. sudanenseSorghum sp.Stylosanthes capitataStylosanthes guianensisStylosanthes macrocephalaStylosanthes sp.Tagetes erectaTagetes minutaTanacetum cinerariifoliumTephrosia candidaThymus sp.Thymus vulgarisTrifolium incarnatumTrifolium pratenseTrifolium repensTrifolium sp.Trifolium subterraneumTrifolium vesiculosumTriticum aestivumUrena lobataUrochloa brizanthaUrochloa dictyoneuraUrochloa eminiiUrochloa plantagineaUrochloa ruziziensis × U. brizanthaUrochloa sp.Urtica sp.Viburnum sp.Vicia sativaVicia sp.Vicia villosaVigna angularisVigna radiataVigna sp.Vigna umbellataVigna unguiculataVitis labruscaVitis rotundifoliaVitis sp.Zanthoxylum simulansZea mays× Triticosecale